Cel badania Badanie ma na celu wykrycie i precyzyjną identyfikację drobnoustrojów – bakterii i rzadziej grzybów – zamieszkujących tylne części gardła oraz określenie ich wrażliwości na dostępne środki antybiotykowe. Dzięki temu lekarz może dobrać terapię celowaną, minimalizując stosowanie niepotrzebnych leków. Wskazania kliniczne Ciężkie lub nawracające zapalenie gardła, które nie ustępuje po standardowej antybiotykoterapii.
Objawy sugerujące infekcję bakteryjną, takie jak silny ból gardła, ropny nalot, gorączka > 38,5 °C. Powikłania górnych dróg oddechowych (np. zapalenie ucha środkowego, zapalenie zatok) wymagające dokładnego rozpoznania etiologicznego. Stan immunosupresji, w tym u osób z ASD, PANS/PANDAS lub innymi zaburzeniami neurorozwojowymi, gdzie infekcje mogą przebiegać atypowo. Kontrola skuteczności leczenia po rozpoczęciu antybiotykoterapii. Potrzeba wykluczenia patogenów atypowych (np.
Mycoplasma pneumoniae, Chlamydia pneumoniae) w przypadkach przewlekłych objawów. Przygotowanie pacjenta Przed pobraniem wymazu pacjent powinien unikać przyjmowania antybiotyków i leków przeciwzapalnych przez minimum 48 h, o ile nie jest to klinicznie konieczne. Nie wymaga się specjalnej diety ani postu, ale należy powstrzymać się od jedzenia i picia (z wyjątkiem wody) przez co najmniej 30 min przed pobraniem próbki, aby ograniczyć ryzyko zanieczyszczenia.
Metoda Materiał biologiczny: wymaz z gardła (kod ICD: MTGARD). Procedura pobrania: Delikatne otwarcie ust i odsłonięcie tylnej części gardła przy jednoczesnym odgarnianiu języka. Użycie sterylnej wymazówki nasączonej transportowym medium (np. Amies, Stuart) do pobrania nalotu z powierzchni gardła, ze szczególnym uwzględnieniem obszarów z ropnym nalotem.
Natychmiastowe umieszczenie wymazówki w szczelnym pojemniku transportowym i dostarczenie do laboratorium w ciągu 2 h; w razie dłuższego transportu – przechowywanie w temperaturze 2‑8 °C. Procedura w laboratorium: Inokulacja próbki na różnorodne podłoża: agar krwi (do wykrycia Streptococcus pyogenes, S. pneumoniae), agar MacConkey (do Gram‑ujemnych), agar Sabouraud (do grzybów) oraz podłoża anaerobowe, jeżeli istnieje podejrzenie patogenów beztlenowych.
Inkubacja w warunkach aerobowych (35‑37 °C, 24‑48 h) oraz, w razie potrzeby, anaerobowych (35‑37 °C, 48‑72 h). Identyfikacja wyhodowanych kolonii metodami biochemicznymi, spektrometrią MALDI‑TOF MS oraz, w wybranych przypadkach, PCR ukierunkowanym na specyficzne geny patogenne. Przeprowadzenie antybiogramu – testu wrażliwości na antybiotyki, wykorzystując metodę dyfuzji w dysku (EUCAST/CLSI) lub mikrodilucję w płynach (broth microdilution).